細胞介紹：

腸指的是從胃幽門至的消化管。腸是消化管中長的一段，也是功能重要的一段。哺乳動物的腸包括小腸、大腸和直腸3大段。
腸壁結構一般分4層，由外向內依次為：漿膜層，平滑肌層，粘膜下層和粘膜層。粘膜層又分為3層：靠近粘膜下層的是一層平滑肌，稱為粘膜肌層。其次為結締組織，又稱為固有層。后面向腸腔的是一層柱狀上皮細胞構成的粘膜。小腸粘膜有縱行和橫行皺襞，并有無數細小的指狀突起，稱為絨毛。絨毛的基底處粘膜內陷成管狀，稱為利貝屈恩氏隱窩。
隱窩基底部的上皮細胞不斷地進行有絲分裂，產生新細胞。隱窩上皮中還有許多杯狀細胞，它分泌粘液，起滑潤食物和保護粘膜的作用。大腸內無絨毛，其大部分上皮細胞分泌粘液。直腸的上皮細胞也分泌粘液。

公司所有產品均不得用于臨床診斷，僅可用于工業或科研等非醫療目的。

細胞特性：

1）來源：腸道組織
2）含量：>5x105 個/mL
3）鑒定：角蛋白(PCK)免yi熒光染色法
4）純度：>85%
5）污染：支原體、細jun、酵母和真jun檢測為陰性
6）規格：1mL凍存管包裝
運輸和保存 ： 1mL凍存管干冰運輸。
細胞使用 ：僅供科研使用。
細胞培養方法
1）完全培養基：ScienCell Epithelial Cell Medium-animal
2）培養方式：上皮樣細胞，貼壁培養

完全培養基：ScienCell Epithelial Cell Medium-animal

操作步驟如下：

1、剪切組織：先將所取得的組織，用D-Hanks或Hanks液清洗，以去除表面血污，并用手術鑷去除黏附的結締組織等非培養所需組織。再次清洗后，用手術刀將組織切成若干小塊，移入青霉素小瓶或小燒杯中，加入適量緩沖液，用彎頭眼科剪，反復剪切組織，直到組織成糊狀，約1mm3大小。靜置片刻后，用吸管吸去上層液體，加入適當的緩沖液再清洗一次。
2、消化分離：消化分離的目的是將細小的組織塊消化分離成細胞團或分散的單個細胞，以利于進一步的培養，常用的消化酶有胰蛋白酶和膠原酶。
3、培養：細胞懸液用計數板進行細胞計數。用培養液將細胞數調整為（2～5）×105 cells／ml，或實驗所需密度，分裝于培養瓶中，使細胞懸液的量以覆蓋后略高于培養瓶底部為宜。置CO2培養箱內，5％CO2，37℃靜置培養。一般3～5d，原代培養細胞可以黏附于瓶壁，并伸展開始生長，可補加原培養液量1／2的新培養液，繼續培養2～3d后換液，一般7～14d可以長滿瓶壁，進行傳代。

視天氣狀況和運輸距離遠近，公司與客戶協商后選擇下述方式中的一種進行。

注意事項：

1)原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，雖然被分散成單個細胞，但它們之間的互相影響還是存在的， 而且這種影響對細胞能否存活是非常重要的。在這些細胞之間能產生一些促生長的活性物質， 使細胞彼此互相促進存活和生長。如果接種的細胞密度過低， 細胞之間的促生長作用很小， 雖然營養物質很充足， 也很難使細胞適應從體內的組織環境到被分散后進入獨立生存環境的變化過程。 如果接種的細胞密度過大，會導致營養物質供應不足， 代謝廢物積累較快需要經常換液和傳代。
2)原代培養時初始培養在組織分散和分離細胞時細胞可能會受到嚴重的損傷。適當增大原代培養接種的細胞密度， 給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用， 會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環境后進行傳代培養時再以較低的密度接種和培養。
3)由于細胞之間的相互的內在聯系被打破，分離細胞在體外培養時經歷的生存環境改變很大，在體外存活和生長的難度相應增加。 對于貼壁依賴性細胞來說，盡快使接種的細胞貼壁，是決定培養能否成功的關鍵。可以在接種后先將培養瓶置培養箱內培養 3h 到 5h，由于細胞懸液中帶有少量培養液， 細胞即可以維持存活， 又可以很快接觸到培養瓶底壁， 是細胞迅速黏附于底物，待細胞貼壁后，再補足培養液繼續培養。
3、分離細胞培養法—懸浮型細胞培養 。

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